血清、血漿、尿液、唾液和細胞的收集和處理方法：1.血清：用無菌管收集，室溫血液天然凝聚10-20分鐘，2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清，保存過程中如出現堆積，應再次離心。
2.血漿：應根據標本的要求挑選EDTA、肝素鈉或檸檬酸鈉作為抗凝劑，混合10-20分鐘后，2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清，保存過程中如有堆積構成，應該再次離心。
3.尿液：用無菌管收集，2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分）。仔細收集上清，保存過程中如有堆積構成，應再次離心。
4.唾液：用無菌管收集，2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清，保存過程中如有堆積構成，應再次離心。
1.培育的細胞A、動物細胞：用PH7.2-7.4的PBS稀釋細胞懸液，使細胞濃度到達100萬/ml左右。經過重復凍融（假如重復凍融，破碎效果欠好，就選用超聲波破碎），以使細胞損壞并放出細胞內成份。2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清，保存過程中如有堆積構成，應再次離心。
B、植物細胞：用PH7.2-7.4的PBS稀釋細胞懸液，使細胞濃度到達100萬/ml左右，置于冰盒上，用超聲破碎儀，設置破碎2s，冷卻30s的方法，充分破碎細胞，以使細胞損壞并放出細胞內成份。2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），仔細收集上清，保存過程中如有堆積構成，應再次離心。
2.組織的細胞切割標本后，稱取1g組織，參加9g的pH7.2-7.4左右的PBS，用手藝或勻漿器將標本勻漿充分。2-8℃條件離心20分鐘左右（2000-3000轉/分），去除上清，再用pH7.2-7.4左右的PBS小心洗刷堆積的細胞三遍。再用上述的細胞破碎方法破碎細胞。
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